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海藻糖的應(yīng)用條件優(yōu)化

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海藻糖的應(yīng)用條件優(yōu)化

摘要:以淀粉為底物,通過(guò)麥芽糖基海藻糖合成酶(maltosyltrehalosesynthase,MTSase)和麥芽糖基海藻糖水解酶(maltosyltrehalosehydrolase,MTHase)兩種酶的共同作用生產(chǎn)海藻糖是一種經(jīng)濟(jì)高效的方法。對(duì)ArthrobacterramosusS34來(lái)源并分別在E.coliBL21(DE3)中表達(dá)的MTSase和MTHase的酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)MTSase的最適溫度為45℃,最適pH為7.0,MTHase的最適溫度為55℃,最適pH為6.0。隨后用2種酶共同作用生產(chǎn)海藻糖,優(yōu)化反應(yīng)條件,考查反應(yīng)溫度、初始pH、底物DE值、加酶量以及底物濃度等因素對(duì)酶轉(zhuǎn)化過(guò)程中海藻糖產(chǎn)率的影響。最佳酶轉(zhuǎn)化條件為反應(yīng)溫度45℃、初始pH5.5,底物DE值8.5,加酶量分別為MTSase最小加量15.75U/g淀粉,MTHase最小加量7.5U/g淀粉。

關(guān)鍵詞:海藻糖;麥芽糖基海藻糖合成酶(maltosyltrehalosesynthase,MTSase);麥芽糖基海藻糖水解酶(maltosyltrehalosehydrolase,MTHase);酶學(xué)性質(zhì);酶轉(zhuǎn)化

海藻糖是一種在自然界中普遍存在的非還原性二糖,以穩(wěn)定的α,?1,1-糖苷鍵連接,不能被α-葡萄糖苷酶分解[1]。海藻糖無(wú)毒,作為糖類(lèi)能夠?yàn)樯矬w提供能量和碳源。另有研究表明,當(dāng)海藻糖與蛋白質(zhì)、脂質(zhì)、組織、器官等共存時(shí),能夠幫助它們抵抗環(huán)境壓力,因此海藻糖還可用于生物物質(zhì)的保存[2,3]。目前已有研究指出不同的酶系統(tǒng)可以有效地以麥芽糖,蔗糖和淀粉作為底物分別產(chǎn)生海藻糖[4-6]。1994年,有研究所發(fā)現(xiàn)2種不同的酶,麥芽糖基海藻糖合成酶(maltosyltrehalosesynthase,MTSase)和麥芽糖基海藻糖水解酶(maltosyltrehalosehydrolase,MTHase)在以淀粉作為反應(yīng)起始底物時(shí),在產(chǎn)生海藻糖的過(guò)程中起重要作用[7]。之后,又有研究人員報(bào)道了以蔗糖為底物通過(guò)三種不同的酶(海藻糖磷酸化酶,蔗糖磷酸化酶和葡萄糖異構(gòu)酶)進(jìn)行海藻糖代謝的合成[4]。1998年,經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),通過(guò)海藻糖合酶可以使以α-1,4-糖苷鍵連接的麥芽糖重組轉(zhuǎn)變?yōu)橐驭??1,1-糖苷鍵連接的海藻糖,實(shí)現(xiàn)以麥芽糖為底物合成海藻糖[8,9]??紤]工業(yè)應(yīng)用中的成本因素,雙酶法所用的底物是比蔗糖和麥芽糖更便宜的淀粉,因此以MTSase和MTHase生產(chǎn)海藻糖是最具成本效益的方法。在雙酶法生成海藻糖的過(guò)程中,淀粉液化后,位于糊精末端的兩個(gè)葡萄糖分子間的α-1,4-糖苷鍵可在MTSase的催化下轉(zhuǎn)化為α,?1,1-糖苷鍵,使其變成帶有一分子海藻糖的糊精。此后,經(jīng)MTHase的水解作用將其水解成兩部分,一部分為目標(biāo)產(chǎn)物海藻糖分子,另一部分為減少兩個(gè)葡萄糖分子的糊精,而第二部分的糊精則作為底物參與下一輪反應(yīng),繼續(xù)生產(chǎn)海藻糖[7]。在國(guó)內(nèi)外的相關(guān)研究中,已經(jīng)對(duì)根瘤菌[10],谷氨酸棒狀桿菌[11],微黃短桿菌[6],節(jié)桿菌[12],分支節(jié)桿菌[7],芝田硫化葉菌[13]以及嗜熱硫礦硫化葉菌[14]來(lái)源的MTSase和MTHase兩種酶基因進(jìn)行了克隆表達(dá),并對(duì)兩種酶的酶學(xué)性質(zhì)及在生產(chǎn)海藻糖過(guò)程中的應(yīng)用條件進(jìn)行了研究。MTSase和MTHase兩種酶分別由基因treY和treZ控制表達(dá),本實(shí)驗(yàn)室于前期構(gòu)建了分別含有treY和treZ的基因工程菌E.coliBL21(DE3)/pET-24a-treY和E.coliBL21(DE3)/pET-24a-treZ,經(jīng)過(guò)發(fā)酵優(yōu)化,發(fā)現(xiàn)目的基因源自于ArthrobacterramosusS34的兩株基因工程菌的發(fā)酵酶活明顯高于已報(bào)道的該來(lái)源兩種酶的發(fā)酵酶活,具有較高的應(yīng)用價(jià)值,相關(guān)論文目前還未發(fā)表。此來(lái)源的兩種酶在E.coliBL21(DE3)中的重組表達(dá)之前未有報(bào)道,因此本研究對(duì)這兩種重組酶的酶學(xué)性質(zhì)以及在制備海藻糖過(guò)程中的條件優(yōu)化進(jìn)行了研究。

1材料與方法

1.1材料與試劑,海藻糖、麥芽四糖、麥芽六糖購(gòu)買(mǎi)于美國(guó)Sigma公司。

1.2儀器與設(shè)備,安捷倫1200高效液相色譜系統(tǒng)購(gòu)買(mǎi)于美國(guó)Agilent公司。

1.3方法:

1.3.1MTSase和MTHase酶活力的測(cè)定MTSase酶活測(cè)定:10uL稀釋一定倍數(shù)的MTSase酶液(空白加高溫滅活的MTSase),加到190uL的10g/L的麥芽六糖溶液中(20mmol/LpH6.0的磷酸鹽緩沖液配制),45℃反應(yīng)10min,100℃沸水中煮10min終止反應(yīng)。取100uL反應(yīng)液于10mL具塞試管中,注入900uL水和1mLDNS溶液,沸水中煮7min,加水補(bǔ)至10mL,最后在540nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度值。MTSase的酶活單位定義為:在45℃時(shí),其他條件恒定,單位時(shí)間內(nèi)每消耗1umol麥芽六糖所需的酶量。酶活公式:MTHase酶活測(cè)定:10uLMTSase濃縮酶液加到490uL10g?L-1的麥芽六糖溶液中(20mmol/LpH6.0的磷酸鹽緩沖液配制),45℃反應(yīng)2h,100℃沸水中煮10min終止反應(yīng)。待溶液冷卻后,加入10uL稀釋一定倍數(shù)的MTHase酶液(空白加高溫滅活的MTHase)到190uL的處理過(guò)的底物中,55℃反應(yīng)10min,100℃沸水中煮10min終止反應(yīng),取100uL反應(yīng)液,加入900uL水和1mLDNS溶液,沸水中煮7min,加水補(bǔ)至10mL,最后在540nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度值。MTHase的酶活單位定義為:在55℃時(shí),其他條件恒定,單位時(shí)間內(nèi)轉(zhuǎn)化生成1umol麥芽四糖所需的酶量。

1.3.2重組蛋白酶學(xué)性質(zhì)的研究1.3.2.1重組MTSase和MTHase的最適溫度分別將底物置于35、40、45、50、55、60、65℃等不同溫度水浴中預(yù)熱3min,按照1.3.1所述方法測(cè)定酶活,算出百分比。定義最高酶活為100%。1.3.2.2重組MTSase和MTHase的溫度穩(wěn)定性將酶液置于45℃中保溫,定期取樣按照1.3.1操作步驟測(cè)定殘余酶活,算出百分比(設(shè)定0h酶活為100%)。1.3.2.3重組MTSase和MTHase的最適pH將酶液分別置于20mmol?L-1pH為4.0~8.0(梯度為0.5)的緩沖液中,在相應(yīng)溫度下預(yù)熱3min,按照1.3.1所述方法測(cè)定相應(yīng)pH條件下的酶活,算出百分比,定義最高酶活為100%。1.3.2.4重組MTSase和MTHase的pH穩(wěn)定性將酶分別置于20mmol/LpH4.0-8.0(梯度為0.5)緩沖液中,于4℃靜置24h,按照1.3.1操作步驟測(cè)定剩余酶活,算出百分比(設(shè)定0h酶活為100%)。1.3.3MTSase和MTHase制備海藻糖的工藝條件優(yōu)化1.3.3.1反應(yīng)溫度的優(yōu)化200g/L的玉米淀粉液化至DE值10,初始pH為6.0,加入5U/g淀粉的普魯蘭酶,30U/g底物的MTSase和MTHase在150r/min的水浴搖床中進(jìn)行反應(yīng)。溫度分別設(shè)置為35、40、45、50、55℃,反應(yīng)36h后終止反應(yīng)并煮沸處理。產(chǎn)物稀釋沉淀后用液相測(cè)定其中海藻糖含量,算出產(chǎn)率。1.3.3.2底物DE值的優(yōu)化200g/L的玉米淀粉液化至DE值分別達(dá)到3.5、6.5、8.5和10.5,初始pH為6.0,加入5U/g淀粉的普魯蘭酶,30U/g的MTSase和MTHase在45℃,150r/min水浴搖床中反應(yīng)36h后終止反應(yīng)并煮沸處理。液相測(cè)定其中海藻糖含量,算出產(chǎn)率。1.3.3.3初始pH的優(yōu)化200g/L的玉米淀粉液化至DE值8.5,加入5U/g淀粉的普魯蘭酶,30U/g的MTSase和MTHase,分別調(diào)節(jié)初始pH為4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0在45℃,150r/min水浴搖床中反應(yīng)36h后終止反應(yīng)并煮沸處理。測(cè)定其中海藻糖含量,算出產(chǎn)率。1.3.3.4加酶量的優(yōu)化200g/L的玉米淀粉液化至DE值8.5,初始pH為5.5,加入5U/g淀粉的普魯蘭酶,再分別加入終濃度為114、75.5、38、19、7.5、3.75、1.875U/g底物的MTHase和終濃度為31.5U/g底物的MTSase。另外分別加入終濃度為31.5、15.75、7.875、3.15、1.575U/g的MTSase和終濃度為114U/g底物的MTHase在45℃,150r/min水浴搖床中反應(yīng)36h后終止反應(yīng)并煮沸處理。液相測(cè)定其中海藻糖含量,算出產(chǎn)率。1.3.3.5底物含量的優(yōu)化分別配置170、240、270、320g/L的玉米淀粉作為底物,液化至DE值8.5,初始pH為5.5,加入5U/g淀粉的普魯蘭酶,30U/g底物的MTSase和MTHase在45℃,150r/min的水浴搖床中反應(yīng)36h后終止反應(yīng)并煮沸處理。測(cè)定其中海藻糖含量,算出產(chǎn)率。

1.3.4海藻糖轉(zhuǎn)化率的測(cè)定產(chǎn)物中的海藻糖含量采用高效液相色譜檢測(cè),NH2柱,體積分?jǐn)?shù)80%的乙腈溶液,流速為0.8mL/min,柱溫為40℃。1.3.5海藻糖轉(zhuǎn)化率的計(jì)算1.3.6優(yōu)化條件下反應(yīng)過(guò)程中海藻糖產(chǎn)量的測(cè)定170g/L的玉米淀粉液化至DE值8.5,初始pH為5.5,加入5U/g淀粉的普魯蘭酶,15.75U/g底物的MTSase和7.5U/g底物的MTHase在45℃,150r/min的水浴搖床中反應(yīng)。反應(yīng)過(guò)程中每隔6h進(jìn)行一次取樣并煮沸處理,36h后終止反應(yīng)。測(cè)定其中海藻糖含量,算出產(chǎn)率。

2結(jié)果與討論

2.1重組MTSase和MTHase的酶學(xué)性質(zhì)2.1.1重組蛋白最適溫度及溫度穩(wěn)定性蛋白酶的催化反應(yīng)速率與反應(yīng)溫度密切相關(guān)。如圖1示,MTSase的最適溫度為45℃,MTHase的最適溫度為55℃。在一定溫度范圍內(nèi),重組MTSase和MTHase的酶活性隨著溫度的升高也呈現(xiàn)逐漸升高的趨勢(shì),由于過(guò)高的溫度會(huì)使蛋白質(zhì)性質(zhì)發(fā)生不可逆的改變,當(dāng)溫度高于45℃時(shí),MTSase的活性隨著溫度的升高開(kāi)始降低;當(dāng)溫度高于55℃時(shí),MTHase的活性開(kāi)始降低。MTSase和MTHase在45℃、50℃下的穩(wěn)定性結(jié)果顯示在圖2中。MTSase和MTHase在45℃的半衰期分別為96h和6h,在50℃的半衰期分別為50h和3h??梢钥闯?,MTSase在45℃和50℃時(shí)具有較高的穩(wěn)定性,MTHase在兩種溫度下的穩(wěn)定性都比較差。2.1.2重組蛋白最適pH及pH穩(wěn)定性酶反應(yīng)的反應(yīng)速率會(huì)受到環(huán)境pH的影響。如圖3所示,MTSase在pH值5.5~8.0的范圍內(nèi)均有70%以上的酶活,并在pH7.0的環(huán)境下,測(cè)得的酶活最高,大于或小于7.0的pH環(huán)境都會(huì)使酶活逐漸降低。MTHase的最適pH為6.0,在大于6.0的pH環(huán)境下,MTHase的活性急速降低,如當(dāng)pH為6.5時(shí),酶活相對(duì)值迅速降低至57.9%;而在小于6.0大于5.0的pH時(shí),MTHase的酶活能夠穩(wěn)定在一定的范圍,達(dá)到酶活相對(duì)值85%以上;在更低的pH(<5.0)時(shí),MTHase的酶活相對(duì)值則急速降低到42%以下。綜上,重組MTHase適合的pH范圍應(yīng)為5.0~6.0。另外,pH穩(wěn)定性結(jié)果(圖4)表明,在4℃時(shí),MTSase和MTHase在pH4.0~8.0均能保證較好的穩(wěn)定性。

2.2重組MTSase和重組MTHase制備海藻糖的工藝條件

2.2.1反應(yīng)溫度與海藻糖轉(zhuǎn)化率的關(guān)系溫度會(huì)使酶的酶活性大小以及酶的穩(wěn)定性發(fā)生改變,從而改變海藻糖的產(chǎn)率。如圖5所示,在反應(yīng)溫度逐漸升高時(shí),海藻糖的轉(zhuǎn)化率也隨著提高,并在45℃時(shí)到達(dá)最高值,為54.2%。但在45℃之后,海藻糖的轉(zhuǎn)化率隨著溫度的升高快速下降,這可能是高溫使得MTHase快速失活而導(dǎo)致的。綜合以上因素,最終選擇45℃作為轉(zhuǎn)化產(chǎn)海藻糖的反應(yīng)溫度。

2.2.2底物液化DE值與海藻糖轉(zhuǎn)化率的關(guān)系底物玉米淀粉液化結(jié)束時(shí)的DE值會(huì)對(duì)與海藻糖的轉(zhuǎn)化率之間也有著密切的聯(lián)系。如圖6所示,海藻糖的轉(zhuǎn)化率隨著DE值的升高而增加,并在DE值為8.5時(shí)達(dá)到最大值56.8%。這可能是因?yàn)樵贒E值過(guò)低時(shí),糊化過(guò)的淀粉底物在溫度自然下降的過(guò)程中更易發(fā)生老化,使得淀粉內(nèi)部已被破壞的分子氫鍵再次結(jié)合,隨著部分分子的有序排列,即造成結(jié)晶沉淀,從而使得底物利用率大大降低[15]。而當(dāng)?shù)孜顳E值達(dá)到8.5時(shí),更高的DE值代表著更低的聚合度,由于MTSase和MTHase在反應(yīng)過(guò)程中只會(huì)對(duì)聚合度≧3的糖鏈起作用[7],因此在一定范圍內(nèi),底物轉(zhuǎn)化成海藻糖的轉(zhuǎn)化率會(huì)隨著淀粉底物聚合度的降低而減少,因此,在DE值為8.5時(shí),最適合進(jìn)行底物制備海藻糖的反應(yīng)。

2.2.3初始pH與海藻糖轉(zhuǎn)化率的關(guān)系由圖7可以看出,重組MTSase和重組MTHase轉(zhuǎn)化底物生成海藻糖的最適初始pH為5.5。初始pH低于5.5或過(guò)高時(shí),海藻糖轉(zhuǎn)化率顯著降低,很可能是一方面過(guò)高或過(guò)低的pH使得酶活性中心的構(gòu)象發(fā)生改變,甚至改變了酶分子的整體結(jié)構(gòu)使其變形失活,導(dǎo)致酶分子的穩(wěn)定性大大降低;另一方面可能是不同pH會(huì)對(duì)酶活性中心附近相關(guān)基團(tuán)的解離狀態(tài)產(chǎn)生一定的影響,造成活性部位與底物結(jié)合難易度的區(qū)別[16]。當(dāng)初始pH處于5.5~6.5之間時(shí),海藻糖轉(zhuǎn)化率也逐漸減少,可能是因?yàn)樵谠損H范圍內(nèi),不同pH導(dǎo)致酶穩(wěn)定性的變化,而這種變化對(duì)海藻糖產(chǎn)率的影響高于酶最適pH對(duì)其的影響。綜上考慮,選擇5.5作為反應(yīng)的初始pH。

2.2.4加酶量與海藻糖轉(zhuǎn)化率的關(guān)系加酶量是影響海藻糖轉(zhuǎn)化率的重要因素,由于海藻糖的轉(zhuǎn)化需要MTSase和MTHase的共同作用,因此對(duì)兩種酶的加量進(jìn)行了研究。如圖8所示,在加酶量充足的情況下,兩種酶的加量比例對(duì)海藻糖的轉(zhuǎn)化率沒(méi)有明顯的影響。在轉(zhuǎn)化過(guò)程中,如要保證一定的海藻糖轉(zhuǎn)化率,兩種酶都有對(duì)應(yīng)的最少加量。如圖8(a),加入足量恒定的MTHase時(shí),控制MTSase的加量,當(dāng)其降低到15.75U/g時(shí),依然能夠保持65%以上的轉(zhuǎn)化率,而當(dāng)MTSase的加量降低到7.875U/g時(shí),海藻糖轉(zhuǎn)化率則直接降低到55%。如圖8(b),加入足量恒定的MTSase時(shí),控制MTHase的加量,在其加量≧7.5U/g時(shí),海藻糖轉(zhuǎn)化率可始終穩(wěn)定在63%以上。因此,在酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)海藻糖過(guò)程中,MTSase和MTHase的最少加量分別為15.75U/g和7.5U/g。

2.2.5底物濃度與海藻糖轉(zhuǎn)化率的關(guān)系為了提高工業(yè)生產(chǎn)中制備海藻糖的效率,研究了底物濃度對(duì)兩種酶共同作用生成海藻糖的轉(zhuǎn)化率的影響,分別在17%、24%、27%、32%四個(gè)不同的底物濃度下對(duì)其進(jìn)行研究。結(jié)果(圖9)顯示,更高的底物濃度會(huì)伴隨有更低的海藻糖轉(zhuǎn)化率,其轉(zhuǎn)化率最高點(diǎn)在底物濃度為17%時(shí)達(dá)到,為67.7%。雖然海藻糖轉(zhuǎn)化率隨著底物濃度的升高而逐漸降低,但考慮到工業(yè)生產(chǎn)中進(jìn)行一批生產(chǎn)所需的人力物力是一定的,因此在具體生產(chǎn)過(guò)程中,應(yīng)對(duì)總體成本進(jìn)行核算,以選取最佳底物濃度。

2.2.6優(yōu)化條件下海藻糖產(chǎn)量的過(guò)程研究經(jīng)條件優(yōu)化后得知,MTHase和MTSase協(xié)同作用產(chǎn)海藻糖在45℃時(shí)能達(dá)到最高的產(chǎn)率??紤]到MTHase在45℃時(shí)的半衰期為6h,因此在45℃下對(duì)海藻糖轉(zhuǎn)化進(jìn)行過(guò)程研究。同時(shí),作為對(duì)照,在反應(yīng)進(jìn)行到12h時(shí),向反應(yīng)體系中補(bǔ)加終濃度為7.5U/g底物的MTHase,繼續(xù)反應(yīng)至36h。結(jié)果(圖10)表明,補(bǔ)加MTHase對(duì)海藻糖最終的轉(zhuǎn)化率沒(méi)有明顯提高。主要的轉(zhuǎn)化過(guò)程在前24h完成,在24h到30h的時(shí)間里,海藻糖含量的增速降低,但依然在增加,直到轉(zhuǎn)化進(jìn)行到30h~36h之間時(shí),海藻糖含量開(kāi)始穩(wěn)定。這表明在整個(gè)反應(yīng)過(guò)程中,MTHase均有著合適的酶活性來(lái)保證反應(yīng)的進(jìn)行,分析原因可能是當(dāng)酶液與底物共同存在時(shí),底物對(duì)MTHase具有保護(hù)作用。

3結(jié)論

本研究中重組菌E.coliBL21(DE3)/pET-24a-treY和E.coliBL21(DE3)/pET-24a-treZ能夠分別高效表達(dá)MTHase和MTSase,經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),MTSase的最適溫度為45℃,最適pH為7.0,MTHase的最適溫度為55℃,最適pH為6.0。在兩種酶的產(chǎn)海藻糖應(yīng)用研究中發(fā)現(xiàn)其最適轉(zhuǎn)化溫度和pH為45℃、初始pH5.5,這與其酶學(xué)性質(zhì)研究結(jié)果相對(duì)應(yīng)。另外,其最適底物DE值為8.5,過(guò)高和過(guò)低的DE值對(duì)其轉(zhuǎn)化率的影響都較大,因此后期在實(shí)際工廠生產(chǎn)中應(yīng)嚴(yán)格控制底物淀粉的液化時(shí)間,以使其DE值達(dá)到8.5左右,保證海藻糖轉(zhuǎn)化率。在反應(yīng)過(guò)程中,MTSase和MTHase最小加量分別為15.75U/g淀粉和7.5U/g淀粉,并且過(guò)量的兩種酶對(duì)海藻糖的轉(zhuǎn)化率都沒(méi)有明顯的影響。因此,在生產(chǎn)過(guò)程中,可以適當(dāng)?shù)脑黾覯TSase和MTHase兩種酶的加量,保證反應(yīng)的正常進(jìn)行。最后,底物濃度對(duì)反應(yīng)的進(jìn)行也有著較大的影響,在其他條件恒定時(shí),轉(zhuǎn)化率在一定范圍內(nèi)隨著底物濃度的升高而降低。同時(shí)考慮到生產(chǎn)過(guò)程中的成本問(wèn)題,應(yīng)當(dāng)結(jié)合具體情況,全面考慮以選擇最優(yōu)的底物濃度。綜上,本研究對(duì)兩種重組酶在海藻糖的生產(chǎn)中的應(yīng)用,具有一定的指導(dǎo)作用。

參考文獻(xiàn):

[1].RICHARDSAB.Trehalose:areviewofproperties,historyofuseandhumantolerance,andresultsofmultiplesafetystudies[J].FoodandChemicalToxicology,2002.40(7):p.871-898.

[2].ELEUTHERIOEC,ARAUJOPS,PANEKAD.ProtectiveroleoftrehaloseduringheatstressinSaccharomycescerevisiae[J].Cryobiology,1993.30(6):p.591-596.

[3].OHTAKES,WANGYJ.Trehalose:currentuseandfutureapplications[J].JPharmSci,2011.100(6):p.2020-2053.

[4].SCHICKI,HALTRICHD,KULBEKD.TrehalosephosphorylasefromPichiafermentansanditsroleinthemetabolismoftrehalose[J].AppliedMicrobiologyandBiotechnology,1995.43(6):p.1088-1095.

[5].SAITOK.PurificationandCharacterizationofaTrehaloseSynthasefromtheBasidiomyceteGrifolafrondosa[J].AppliedandEnvironmentalMicrobiology,1998.64(11):p.4340-4345.

[6].KIMYH.TrehalosesynthesisbysequentialreactionsofrecombinantmaltooligosyltrehalosesynthaseandmaltooligosyltrehalosetrehalohydrolasefromBrevibacteriumhelvolum[J].ApplEnvironMicrobiol,2000.66(11):p.4620-4624.

[7].YAMAMOTOT.Trehalose-producingoperontreYZfromArthrobacterramosusS34[J].BiosciBiotechnolBiochem,2001.65(6):p.1419-1423.

[8].KOHSK.TrehalosesynthesisfrommaltosebyathermostabletrehalosesynthasefromThermuscaldophilus[J].BiotechnologyLetters,1998.20(8):p.757-761.

[9].CHOYJ,PARKOJ,SHINHJ.Immobilizationofthermostabletrehalosesynthasefortheproductionoftrehalose[J].Enzymeandmicrobialtechnology,2006.39(1):p.108-113.

[10].MARUTAK,HATTORIK,NAKADAT,etal.CloningandsequencingoftrehalosebiosynthesisgenesfromRhizobiumsp.M-ll[J].Bioscience,biotechnology,andbiochemistry,1996,60(4):717-720.

[11].CARPINELLIJ,KRAMERR,AGOSINE.MetabolicengineeringofCorynebacteriumglutamicumfortrehaloseoverproduction:roleoftheTreYZtrehalosebiosyntheticpathway[J].Appliedandenvironmentalmicrobiology,2006,72(3):1949-1955.

[12].MARUTAK,HATTORIK,NAKADAT,etal.CloningandsequencingoftrehalosebiosynthesisgenesfromArthrobactersp.Q36[J].BiochimicaetBiophysicaActa(BBA)-GeneralSubjects,1996,1289(1):10-13.

[13].DiLERNIAI,MORANAA,OTTOMBRINOA,etal.EnzymesfromSulfolobusshibataefortheproductionoftrehaloseandglucosefromstarch[J].Extremophiles,1998,2(4):409-416.

[14].FANGTY,TSENGWC,GUOMS,etal.Expression,Purification,andCharacterizationoftheMaltooligosyltrehaloseTrehalohydrolasefromtheThermophilicArchaeonSulfolobussolfataricusATCC35092[J].Journalofagriculturalandfoodchemistry,2006,54(19):7105-7112.

[15].唐聯(lián)坤.淀粉糊化、老化特性與食品加工[J].西部糧油科技,1996,21(03):26-29.

[16].王寧,吳丹,陳晟,等.利用來(lái)源于Paenibacillusmacerans的α-CGTase突變體Y89D制備α-環(huán)糊精[J].食品科學(xué),2011,32(03):165-170.

作者:王魁1,2宿玲恰1,2吳敬1,2陳晟1,2* 單位:1江南大學(xué),食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室2,生物工程學(xué)院工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室

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